гемодилюция это в медицине что такое
ГЕМОДИЛЮЦИЯ управляемая
ГЕМОДИЛЮЦИЯ управляемая (греч, haima кровь + лат. diluere разводить, разжижать) — способ трансфузионной терапии, предусматривающий дозированное разбавление крови плазмозамещающими жидкостями с сохранением состояния нормоволемии (нормальный объем крови).
Как целенаправленное воздействие Г. стала применяться с 60-х годов 20 в., сначала гл. обр. в практике искусственного кровообращения (см.). Позднее в реанимации и интенсивной терапии этот принцип был взят за основу при составлении программ трансфузионной терапии ряда заболеваний и патол, состояний. Метод позволяет предупредить развитие многих тяжелых нарушений при травме, хирургическом вмешательстве, интоксикации и т. п.
В механизме действия различают две фазы. В первую, основную, благодаря снижению вязкости, повышению устойчивости суспензионной структуры, уменьшению сопротивления кровотоку достигается существенный реологический эффект, т. е. улучшение текучих свойств крови. Это приводит к возрастанию полезной работы сердца, интенсивности кровообращения и, что особенно важно, улучшает микроциркуляцию благодаря предупреждению и устранению явлений агрегации и патол, депонирования компонентов крови. Не менее важным следствием оказывается интенсификация обмена между сосудистым и интерстициальным секторами внеклеточного пространства, приводящая к более быстрому освобождению последнего от продуктов метаболизма, деструкции клеток, бактериальных токсинов и т. д.
Во вторую фазу, совпадающую по времени с устранением состояния Г., происходит энергичное освобождение организма от шлаковых и токсических веществ, что обусловливает выраженный дезинтоксикационный эффект (см. Дезинтоксикационная терапия).
В качестве плазмозаменителей-гемодилютантов могут быть использованы различные трансфузионные р-ры, в т. ч. выпускаемые стандартные кровезамещающие препараты волемического и дезинтоксикационного действия. Однако в связи с необходимостью их применения в значительных количествах особую актуальность приобретают требования адекватности ионного состава, осмолярности, отсутствия антигенных свойств и др. Поскольку таким требованиям в полной мере большинство фабрично выпускаемых кровезаменителей еще не отвечает, практически используют комбинации стандартных р-ров, добавляя к ним некоторые дополнительные ингредиенты: соли калия, ощелачивающие средства, энергетически активные субстанции и т. д. Определенный успех достигнут в разработке комплексных препаратов для гемодилюции, в частности так наз. перфузионных коктейлей (см. Кровезамещающие жидкости, Плазмозамещающие растворы).
Хотя состояние Г. с сохранением заданной степени разбавления крови может быть получено и при использовании кристаллоидных р-ров (с учетом их перераспределения между сосудистым и интерстициальным секторами), предпочтительнее применять р-ры, содержащие коллоид синтетического или естественного происхождений: препараты декстрана, поливинилового спирта, желатины, альбумин и др. Для получения максимального реологического эффекта используют в основном низкомолекулярные фракции коллоидных веществ (реополиглюкин, желатиноль и др.).
Методика гемодилюции
Методика гемодилюции зависит от исходного состояния гемодинамики, и в частности адекватности объема циркулирующей крови. При отсутствии дефицита объема циркулирующей крови, т. е. при исходной нормоволемии, для получения Г. необходима предварительная эксфузия соответствующего объема крови с одновременным заместительным переливанием р-ров. При исходной гиповолемии заместительные р-ры переливают без кровопускания. Полученную при эксфузии кровь хранят (обычно в стандартной посуде для двухэтапной заготовки с консервантом) с соблюдением всех требований до последующей реинфузии после прекращения Г. или используют для возмещения интраоперационной кровопотери.
Объем трансфузии гемодилютантов зависит от величины объема циркулирующей крови и избранного уровня разбавления крови. Установлено, что положительные стороны Г. наиболее ярко проявляются при разбавлении крови на 20—30% (к величине должного объема циркулирующей крови), что соответствует уровню гематокрита в пределах 30—35. Г. более 40% опасна ввиду чрезмерного снижения концентрации плазменных белков, факторов гемокоагуляции, кислородной емкости крови и др. Однако при определенных условиях (гипотермия, консервация органов) эти недостатки нивелируются.
Обычно после устранения стрессор-ного воздействия (операция, наркоз, болевой фактор и т. п.) включаются механизмы регуляции системы гомеостаза (см.) и состояние Г. становится для организма неадекватным. Обычным путем освобождения организма от гемодилютанта является диурез, в меньшей степени перспирация (экстраренальные потери жидкости). Возможно также выделение жидкости через рану, перемещение ее из сосудистого русла в полости и тканевые депо. Темп выведения жидкости можно регулировать, в т. ч. воздействуя на диурез (медикаментозные средства, осмодиуретики, применение легко- или труднодиализируемых коллоидов и т. п.). Этим пользуются в тех случаях, когда состояние Г. нужно либо быстрее ликвидировать, либо, напротив, пролонгировать, напр, для профилактики тромбообразования после операций на сосудах, трансплантации органов и т. д. В последних случаях применяют продолжительные (сутки и более) трансфузии коллоидных кровезаменителей. Адекватность Г. контролируют по данным определения объема циркулирующей плазмы, гематокрита, электролитного состава, кислотно-щелочного состояния и газов крови, свертывающей и противосвертывающей систем крови.
Ввиду сложности и многокомпонентности методики, опасности развития глубоких сдвигов осмотического и энергетического баланса проведение Г. допустимо лишь в условиях хорошо оснащенных клин, учреждений при высокой квалификации специалистов и использовании современных методов контроля.
Библиография: Кровезаменители, под ред. А. Н. Филатова, М., 1975; ФилатовА. Н. и Баллюзек Ф. В. Управляемая гемодилюция, Л., 1972, библиогр.
Влияние гемодилюции in vitro и in vivo на систему гемостаза
Полный текст:
Аннотация
Цель исследования — определить в эксперименте, как гемодилюция раствором стерофундин/гелофузин (С/Г) в соотношении 2:1 влияет in vitro и in vivo на параметры системы гемостаза.
Материал и методы. Эксперименты провели на 75 крысах-самцах линии Wistar массой 270–380 г, наркотизированных тилетамин/золазепамом (40 мг/кг внутримышечно) + ксилазином (10 мг/кг внутримышечно). Животных разделили случайным образом на 4 группы: группа I — разведение образцов крови из сонной артерии С/Г in vitro на 25% (n=12), группа II — разведение крови in vitro на 37,5% (n=11), группа III — разведение in vivo на 25% (n=10), группа IV — контрольная (n=42) — без разведения. На первом этапе исследования сравнивали группы разведения in vitro с контрольной группой и между собой, на втором этапе — группу разведения in vivo сравнивали с контрольной группой. Для оценки влияния гемодилюции исследовали параметры низкочастотной пьезотромбоэластографии (НПТЭГ), тестов по оценке свертывания крови и общего анализа крови.
Результаты. При гемодилюции на 25% in vitro и in vivo С/Г в соотношении 2:1 изучаемые параметры системы гемостаза не выходили за рамки референсных границ, но in vitro отмечали тенденцию к усилению интенсивности ферментативного этапа свертывания и значимое усиление полимеризации сгустка по причине относительной недостаточности антикоагулянтов. Разведение крови in vitro на 37,5% значимо сокращало в крови количество фибриногена и тромбоцитов, ингибировало интенсивность протеолитического этапа свертывания, уменьшало плотность тромба в точке желирования T3, на 5-й минуте после ее достижения и максимальную амплитуду (МА) кривой НПТЭГ, а также значимо уменьшало антикоагулянтную активность крови. Выявленные изменения параметров системы гемостаза значительно выходили за границы референсных значений. Показано, что при разведении in vivo на 25% значения показателя плотности тромба отрицательно коррелировали с интенсивностью контактной коагуляции (величина отрицательная), а при разведении in vitro на 37,5% эти значения положительно коррелировали также и с количеством тромбоцитов и содержанием фибриногена.
Заключение. Гемодилюция раствором С/Г в соотношении 2:1 на 25% по объему минимально изменяет параметры гемостаза in vitro и является относительно безопасной для системы гемостаза.
Ключевые слова
Об авторах
Александр Анатольевич Кинзерский
644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12
10703, г. Москва, ул. Петровка, д. 25, стр. 2
644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12
644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12
644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12
Список литературы
1. Martini W.Z. Coagulation complications following trauma. Mil. Med. Res. 2016; 3: 35. DOI: 10.1186/s40779-016-0105-2
2. Баранич А.И., Сычев А.А., Савин И.А., Полупан А.А., Ошоров А.В., Потапов А.А. Нарушения системы гемостаза у пациентов в остром периоде изолированной черепно-мозговой травмы (обзор). Общая реаниматология. 2018; 14 (5): 85-95. DOI: 10.15360/1813-9779-2018-5-85-95
3. Spahn D. R., Bouillon B., Cerny V., Duranteau J., Filipescu D., Hunt B. J., Komadina R., Maegele M., Nardi G., Riddez L., Samama C-M., Vincent J-L., Rossaint R. The European guideline on management of major bleeding and coagulopathy following trauma: fifth edition. Critical Care. 2019; 23: 98. DOI: 10.1186/s13054-019-2347-3.
4. Mullier F., Lessire S., De Schoutheete J-C., Chatelain B., Deneys V., Mathieux V., Hachimi Idrissi S., Dogne J-M., Watelet J-B., Gourdin M., Dincq A-S. Facing coagulation disorders after acute trauma. B-ENT. 2016; 26 (1): 67-85.
5. Баранич А.И., Сычев А.А., Савин И.А., Полупан А.А., Ошоров А.В., Потапов А.А. Коагулопатия, ассоциированная с острым периодом черепно-мозговой травмы. Общая реаниматология. 2020; 16 (1): 27-34. DOI: 10.15360/1813-9779-2020-1-27-34
6. Кугаевская Е.В., Гуреева Т.А., Тимошенко О.С., Соловьева Н.И. Система активатора плазминогена урокиназного типа в норме и при жизнеугрожающих процессах (обзор). Общая реаниматология. 2018; 14 (6): 61-79. DOI: 10.15360/1813-9779-2018-6-61-79
7. Hampton D. A., Fabricant L. J., Differding J., Diggs B., Underwood S., De La Cruz D., Holcomb J. B., Brasel K. J., Cohen M. J., Fox E. E., Alarcon L. H., Rahbar M. H., Phelan H. A., Bulger E. M., Muskat P., Myers J. G., del Junco D. J., Wade C. E., Cotton B.A., Schreiber M. A. Prehospital intravenous fluid is associated with increased survival in trauma patients. J Trauma Acute Care Surg. 2013; 75 (1): 9-15. DOI: 10.1097/TA.0b013e318290cd52
8. Boyd C.J., Claus M.A., Raisis A.L., Hosgood G., Sharp C.R., Smart L. Hypocoagulability and platelet dysfunction are exacerbated by synthetic colloids in a canine hemorrhagic shock model. Front Vet Sci. 2018; 5: 279-290. DOI: 10.3389/fvets.2018.0027
9. Sevcikova S., Vymazal T., Durila M. Effect of balanced crystalloid, gelatin and hydroxyethyl starch on coagulation detected by rotational thromboelastometry in vitro. Clin Lab. 2017; 63 (10): 1691-1700. DOI: 10.7754/Clin.Lab.2017.170505
10. Kozek-Langenecker S.A. Fluids and coagulation. Curr Opin Crit Care. 2015; 21 (4); 285-291. DOI: 10.1097/mcc.0000000000000219
11. Wu R., Peng L-G., Zhao H-M. Diverse coagulopathies in a rabbit model with different abdominal injuries. World J. Emerg. Med. 2017; 8 (2): 141-147. DOI: 10.5847/wjem.j.1920-8642.2017.02.011
12. Dyer M., Haldeman S., Gutierrez A., Kohut L., Gupta A.S., Neal M.D. Uncontrolled hemorrhagic shock modeled via liver laceration in mice with real time hemodynamic monitoring. J Vis Exp. 2017; 123: 55554. DOI: 10.3791/55554
13. Wang H., Cao H., Zhang X., Ge L., Bie L. The effect of hypertonic saline and mannitol on coagulation in moderate traumatic brain injury patients. Am J Emerg Med. 2017; 35 (10): 1404-1407. DOI: 10.1016/j.ajem.2017.04.020
14. Ponschab M., Schöchl H., Keibl C., Fischer H., Redl H., Schlimp C.J. Preferential effects of low volume versus high volume replacement with crystalloid fluid in a hemorrhagic shock model in pigs. BMC Anesthesiol. 2015; 15: 133. DOI: 10.1186/s12871-015-0114-9
15. Соловьев М.А., Тютрин И.И., Удут В.В., Клименкова В.Ф. Опыт диагностики и мониторинга критических нарушений гемостаза. Медико-биологические и социально-психологические проблемы безопасности в чрезвычайных ситуациях. 2013; (4): 55-60. DOI: 10.25016/2541-7487-2013-0-4-55-60
16. Удут В.В., Тютрин И.И., Котловская Л.Ю. Соловьёв M.A., Жуков Е.Л., Ластоветский А.Г., Бородулина Е.Г., Котловский М.Ю. Технология низкочастотной пьезотромбоэластографии в оценке гемостатического потенциала. Вестник новых медицинских технологий. 2016; 4 DOI: 10.12737/22220
17. Кинзерский А.А., Долгих В.Т., Кожук М.С. Методика получения референтных значений низкочастотной пьезотромбоэластографии у крыс-самцов линии Wistar. Сибирский медицинский журнал (Иркутск). 2016; 142 (3): 25-28.
18. Кинзерский А.А., Долгих В.В., Коржук М.С. Нормальные значения низкочастотной пьезотромбоэластографии крыс-самцов Wistar, полученные под ксилазин+тилетамин-золазепам анестезией при заборе крови из сонной артерии. Свидетельство о государственной регистрации базы данных №2016620346 // Бюл. № 4. Опубликовано 20.04.2016.
19. Кинзерский А.А., Петрова Ю.А, Коржук М.С., Долгих В.Т. Нормальные значения общего, биохимического анализа крови и коагулограммы крыс-самцов линии Wistar. Свидетельство о государственной регистрации базы данных № 2017620486/02.05.17. Бюл. №5.
20. Липатов В.А., Северинов В.А., Крюков В.А., Саакян А.Р. Этические и правовые аспекты проведения экспериментальных биомедицинских исследований in vivo часть II. Российский медико-биологический всестник им. И.П. Павлова. 2019; 27 (2): 245-257. DOI: 10.23888/PAVLOVJ2019272245-257
21. Кинзерский А.А., Долгих В.В., Коржук М.С. Временные и структурные показатели динамики тромбообразования низкочастотной пьезотромбоэластографии крыс-самцов wistar, полученные под ксилазин+тилетамин/золазепам анестезией при заборе крови из сонной артерии № 201662071 // Бюл. № 6. Опубликовано 01.06.2016.
22. Мастицкий С.Э., Шитиков В.К. Cтатистический анализ и визуализация данных с помощью R. Хайдельберг — Лондон Тольятти. 2014: 401
23. Haas T., Mauch J., Weiss M., Schmugge M. Management of dilutional coagulopathy during pediatric major surgery. Transfus Med Hemother. 2012; 39 (2): 114–119. DOI: 10.1159/000337245
24. Долгов В.В., Свирин П.В. Лабораторная диагностика нарушений гемостаза. М. — Тверь: ООО издательство «Триада»; 2005: 227. ISBN 5-94789-114-X
25. Ruttmann T.G., Lemmens H.J.M., Malott K.A., Brock-Utne J.G. The haemodilution enhanced onset of coagulation as measured by the thrombelastogram is transient. Eur J Anaesthesiol. 2006; 23 (7): 574-579. DOI: 10.1017/S0265021506000238
26. Veigas P.V., Callum J., Rizoli S., Nascimento B., Luz L.T. A systematic review on the rotational thrombelastometry (ROTEM®) values for the diagnosis of coagulopathy, prediction and guidance of blood transfusion and prediction of mortality in trauma patients. Scand. J. Trauma Resusc. Emerg. Med. 2016; 24 (1): 114. DOI: 10.1186/s13049-016-0308-2
27. Morris B.R., Laforcade A, Lee J., Palmisano J., Meola D., Rozanski E. Effects of in vitro hemodilution with crystalloids, colloids, and plasma on canine whole blood coagulation as determined by kaolin‐activated thromboelastography. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2016; 26 (1): 58-63. DOI: 10.1111/vec.12345
28. Schäfer N., Driessen A., Bauerfeind U., Fröhlich M., Ofir J., Stürmer E. K., Maegele M. In vitro effects of different sources of fibrinogen supplementation on clot initiation and stability in a model of dilutional coagulopathy. Transfus Med. 2016; 26 (5): 373–380. DOI: 10.1111/tme.12333
29. Sevcikova S., Durila M., Vymazal T. Rotational thromboelastometry assessment of ballanced crystalloid, hydroxyethyl starch and gelatin effects on coagulation: a randomized trial. Rev Bras Anestesiol. 2019; 69 (4): 383–389. DOI: 10.1016/j.bjan.2019.03.009
30. Kam P., Varanasi S., Yang K.X. The effects of haemodilution with succinylated gelatin solution on coagulation in vitro as assessed by thromboelastometry and impedance (multiple electrode) aggregometry. Anaesth Intensive Care. 2018; 46 (3): 272–277. DOI: 10.1177/0310057X1804600304
Для цитирования:
Кинзерский А.А., Долгих В.Т., Коржук М.С., Кинзерская Д.А., Романенко С.В. Влияние гемодилюции in vitro и in vivo на систему гемостаза. Общая реаниматология. 2021;17(4):48-64. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-4-1-0
For citation:
Kinzersky A.A., Dolgikh V.T., Korzhuk M.S., Kinzerskaya D.A., Romanenko S.V. Effect of Hemodilution in vitro and in vivo on the Hemostatic System. General Reanimatology. 2021;17(4):48-64. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-4-1-0
Гемодилюция и операции замещения крови
Весь контент iLive проверяется медицинскими экспертами, чтобы обеспечить максимально возможную точность и соответствие фактам.
У нас есть строгие правила по выбору источников информации и мы ссылаемся только на авторитетные сайты, академические исследовательские институты и, по возможности, доказанные медицинские исследования. Обратите внимание, что цифры в скобках ([1], [2] и т. д.) являются интерактивными ссылками на такие исследования.
Если вы считаете, что какой-либо из наших материалов является неточным, устаревшим или иным образом сомнительным, выберите его и нажмите Ctrl + Enter.
Разведение крови (гемодилюция) для снижения концентрации в ней токсичных веществ давно применяют в практической медицине. Этой цели служат водная нагрузка (обильная питье) и парентеральное введение водно-электролитных и плазмозамещающих растворов. Последние особенно ценны при острых отравлениях, поскольку позволяют одновременно с гемодилюцией восстановить ОЦК и создать условия для эффективной стимуляции диуреза Операция замещения крови (гемаферез).
Общая характеристика
К основным лечебным факторам данной процедуры, состоящей в одновременно проводимом и равном по объему кровопускании и переливании крови, относятся следующие детоксикационный, депурационный, субституирующий и общебиологический.
Детоксикационный фактор основан на возможном удалении с кровью больного различных токсичных веществ. В клинической практике имеется реальная возможность проведения лишь частичной операции замещения крови (ОЗК) в объеме 1,5-3 л, в то время как для практически полного (95%) замещения крови больного необходимо перелить не менее 15 л крови донора, т е в количестве, в 3 раза превышающем средний ОЦК.
Это обстоятельство значительно снижает эффективность ОЗК как метода детоксикации, так как позволяет вывести из крови не более 15% токсиканта.
Депурационное действие операции замещения крови состоит в освобождении организма от крупномолекулярных соединений (свободный гемоглобин плазмы, миоглобин и др), что принципиально отличает этот метод детоксикации от диализных, при которых подобное очищение невозможно.
Субституирующее действие операции замещения крови заключено в замещении измененной в морфологическом и функциональном отношении крови больного (метгемоглобинемия и др) полноценной донорской кровью, в результате чего кровь реципиента по своему составу приближается к донорской.
ГЕМОДИЛЮЦИЯ
Смотреть что такое «ГЕМОДИЛЮЦИЯ» в других словарях:
гемодилюция — (haemodilutio; гемо + лат. dilutio разведение) см. Гидремия … Большой медицинский словарь
Гемодилюция — Син.: Гидремия. Повышенное содержание воды в крови. Может быть патологической – возникающей вследствие нарушения водно солевого обмена, компенсаторной – обусловленной введением после кровопотери в сосудистое русло чрезмерного количества растворов … Энциклопедический словарь по психологии и педагогике
гемодилюция управляемая — способ трансфузионной терапии, предусматривающий дозированное разбавление крови плазмозамещающими жидкостями с сохранением нормального объема крови … Большой медицинский словарь
Гемодилюция управляемая — I Гемодилюция управляемая (греч haima кровь + лат. dilutio разведение) дозированное разбавление циркулирующей крови кровезамещающими средствами. Улучшает реологические свойства крови, уменьшает агрегацию ее форменных элементов, ускоряет удаление… … Медицинская энциклопедия
Гемодилюция (Haemodilution) — уменьшение количества эритроцитов в плазме, связанное с увеличением общего объема плазмы. Причины гемодилюции могут быть различными, в том числе беременность и увеличение селезенки (см. Гиперспленизм). Для сравнения: Гемоконцентрация. Источник:… … Медицинские термины
Инфукол ГЭК — Латинское название Infukoll HES АТХ: ›› B05AA07 Гидроксиэтилкрахмал Фармакологическая группа: Заменители плазмы и других компонентов крови Нозологическая классификация (МКБ 10) ›› E86 Уменьшение объема жидкости [гиповолемия] ›› I63 Инфаркт мозга… … Словарь медицинских препаратов
Токсико́зы бере́менных — (toxicoses gravidarum, синоним гестозы) патологические состояния беременных, причинно связанные с развивающимся плодным яйцом и, как правило, исчезающие в послеродовом периоде. Токсикоз, проявляющийся в первые 20 нед. беременности, обычно… … Медицинская энциклопедия
Волювен — Действующее вещество ›› Гидроксиэтилкрахмал (Hydroxiethyl starch) Латинское название Voluven АТХ: ›› B05AA07 Гидроксиэтилкрахмал Фармакологическая группа: Заменители плазмы и других компонентов крови Нозологическая классификация (МКБ 10) ›› E86… … Словарь медицинских препаратов
ХАЕС-стерил — Действующее вещество ›› Гидроксиэтилкрахмал (Hydroxiethyl starch) Латинское название HAES steril АТХ: ›› B05AA07 Гидроксиэтилкрахмал Фармакологическая группа: Регуляторы водно электролитного баланса и КЩС Нозологическая классификация (МКБ 10)… … Словарь медицинских препаратов
Ишемический инсульт — Компьютерная томограмма головного мозга, демонстрирующая инфаркт в правом полушарии головн … Википедия
Переливание крови (гемотрансфузия)
Гемотрансфузия – это лечебная процедура по внутривенному переливанию донорской крови и/или ее компонентов (эритроцитов, тромбоцитов, замороженной плазмы). Процедура проводится при заболеваниях крови, а также при проведении лучевой и/или химиотерапии в ходе лечения злокачественных опухолей.
В отделении гематологии «СМ-Клиника» переливание крови и ее компонентов проводят высококвалифицированные специалисты с большим опытом. Для проведения гемотрансфузии мы применяем новейшее оборудование и используем только тщательно проверенные замороженные донорские компоненты крови.
Проведение гемотрансфузий в «СМ-Клиника» это
Принцип действия гемотрансфузии
В состав человеческой крови входит плазма и различные типы клеток. Благодаря современным технологиям кровь можно разделить на отдельные компоненты и переливать только те, которые необходимы конкретному пациенту.
В результате происходит восполнение или замещение недостающего вида клеток – при переливании эритроцитов или тромбоцитов. Если же организму не хватает каких-либо веществ (фибриногена, протромбина, антитромбина- 3) проводят трансфузию свежезамороженной плазмы.
После переливания крови у пациентов отмечается значительное улучшение общего самочувствия: не беспокоят слабость и головокружения, повышается аппетит, исчезает кровоточивость. Оценка эффективности процедуры переливания крови из вены проводится по данным анализа крови, взятым на следующий день после процедуры.
Показания к проведению гемотрансфузии
В «СМ-Клиника» переливание крови проводят при различных гематологических и онкологических заболеваниях, в том числе:
Как проходит переливание крови
Максимальный объем трансфузии:
800 мл плазмы или компонентов крови
В «СМ-Клиника» переливание плазмы и компонентов крови проводится амбулаторно или в условиях стационара – в зависимости от объема переливаемых препаратов крови и общего состояния пациента.
Переливание крови при низком гемоглобине и других патологиях проводится под постоянным контролем врача с использованием с использованием современного оборудования: инфузомата, проведение мониторинга (АД, ЧСС, SpO2).
Перед началом переливания плазмы крови или ее компонентов врач сверяет данные реципиента и донорского биоматериала. Однако негативная реакция организма на чужую кровь все равно возможна, поэтому обязательно проводится биологическая проба. Для этого врач вводит 15 мл донорской жидкости и оценивает реакцию организма спустя 10 минут. При отсутствии негативных последствий начинают основной этап гемотрансфузии крови или плазмы.
Процедура длится от 30–40 минут до 3– 4 часов: время зависит от типа переливаемого препарата крови. Так, тромбоцитарный концентрат переливается быстрее, чем эритроцитарная масса. Кроме того, за один сеанс можно перелить не более 800 мл плазмы или компонентов крови. После процедуры 2–3 часа вы проводите в клинике под наблюдением врача.